viernes, 6 de marzo de 2015

DETERMINACIÓN CUALITATIVA DE LA HORMONA GONOGOTROPINA CORIONICA HUMANA (hCG)

DETERMINACIÓN CUALITATIVA DE LA HORMONA GONOGOTROPINA CORIONICA HUMANA (hCG)



PRINCIPIO DEL MÉTODO
 La prueba de hCG-Látex es una técnica de aglutinación en porta para la detección directa cualitativa de la hCG en orina y suero humanos. Las partículas de látex recubiertas con anticuerpo monoclonal anti-hCG (Nota 1) son aglutinadas por moléculas de hCG presentes en la muestra del paciente. 


SIGNIFICADO CLÍNICO
La hCG es una hormona secretada por la placenta de la mujer embarazada que aparece relativamente pronto en sangre y orina después de la implantación del embrión fecundado. Puede ser detectada en orina a partir del tercer día de la perdida del periodo menstrual y su concentración sigue aumentando hasta 


CALIBRACION
La sensibilidad del reactivo de látex está estandarizada frente al 3º Patrón Internacional de hCG 75/537 de NIBS (UK).

 CONSERVACION Y ESTABILIDAD Todos los componentes del kit están listos para su uso, y son estables hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta del vial, cuando se mantienen los viales bien cerrados a 2-8ºC, y se evita la contaminación durante su uso. No congelar: la congelación de los reactivos altera irreversiblemente la funcionalidad de éstos. Indicadores de deterioro de los reactivos: Presencia de partículas y turbidez. 

MATERIAL ADICIONAL 
- Agitador mecánico rotatorio de velocidad regulable a 80-100 r.p.m. 
-Agitador vortex
-Pipetas de 50 ml 

MUESTRAS 
-Orina o suero fresco (Nota 2). Se recomienda utilizar la orina de la primera hora de la mañana, ya que generalmente contiene mayor concentración de hormona.
- Muestras de orina: estable 48 horas a 2-8ºC o 3 meses a –20ºC. 
-Muestras de suero: estables 7 días a 2-8ºC o 3 meses a –20ºC. 
Las muestras de suero u orina que presentan turbidez deben centrifugarse antes de la prueba. 
No utilizar muestras de suero altamente hemolizadas o lipémicas. 


PROCEDIMIENTO 
1. Atemperar los reactivos y las muestras a temperatura ambiente. La sensibilidad del ensayo disminuye a temperaturas bajas. 
2. Depositar 100 µL de la muestra a ensayar y una gota de cada uno de los controles Positivo y Negativo, sobre círculos distintos de un porta. 
3. Homogeneizar suavemente el reactivo de hCG- látex antes de usar. Depositar una gota (50 µL) junto a cada una de las gotas anteriores. 
4. Mezclar las gotas con un palillo, procurando extender la mezcla por toda la superficie interior del círculo. Emplear palillos distintos para cada muestra. 
5. Situar el porta sobre un agitador rotatorio a 80–100 r.p.m. durante 2 minutos


LECTURA E INTERPRETACION
Examinar macroscópicamente la presencia o ausencia de aglutinación
inmediatamente después de retirar el porta del agitador. La presencia
de aglutinación indica una concentración de hCG igual o superior a
200 UI/L.(Nota 3).


CONTROL DE CALIDAD
Se recomienda utilizar el control positivo y negativo para controlar la
funcionalidad del reactivo de látex, así como modelo de comparación
para la interpretación de los resultados.


VALORES DE REFERENCIA
Suero: 5 – 50 UI/L entre 0,2 – 1 semana de gestación.
Orina: 50 – 5000 UI/L entre 1 – 2,5 semanas de gestación.
Es recomendable que cada laboratorio establezca sus propios valores
de referencia.



RESULTADO ORINA: NEGATIVO.













BIOMOLECULAS

BIOMOLECULAS 

Introducción
Entre los compuestos fundamentales de la materia viva de las celulas encontamos los carnhidratos, lipidos y proteinas; por esta razon, los alimentos que consumen todos los heterotrofos, incluido el ser humano, deben contener necesariamente estas macromoleculas.
Mediante el uso de pruebas quimicas sencillas se puede identificar en los alimentos la precencia de estas macromoleculas.

Objetivo.
El alumno distinguira, en forma practica que alimentos contienes carbohidratos, y cuales proteinas y grasas.

Materiales: 
-10 tubos de ensaye 
- 1 Gradilla
-2 vasos de precipitado de 100ml.
-1 Agitador
-1 Mechero bunsen 
- 2 Pinzas para tubo de ensaye. 
-1 Gotero
- 1 pliego de papel estraza.

Sustancias:
Para carbohidratos:
-Reactivo de Fehling
-Ácido Clorhidrico al 50%
-  Lugol (Solución alcoholica de Yodo) 
Para proteinas:
-Reactivo de Biuret 
- Acido nitrico concentrado.
- Hidroxido de amonio concentrado 
Para lipidos:
Sudan III

Muestras de alimentos:
-Harinas (Trigo)
- Frutas (Manzana)
-Verduras ( Zanaoria)
Carnes ( Higado de pollo)
-Lacteos (queso)
-Semillas (Haba) 
De preferencia que los alimentos estén hervidos a excepción
 de las frutas.

Procedimiento:
Reacciones para identificar carbohidratos
1,- Prueba de lugol ( se utiliza pra identificar almidones)
  • Coloca una pequeña cantidad de la muestra en un tubo de ensayo. 
  • Agregar dos gotas de lugol
  • Observar el color que toma la mesta al reaccionar con el lugo.
  • Repite la prueba  en por lo menos 5 alimentos diferentes
  • Anotar los resultados en la taba de registro 
Si la muestra contiene alimdon , con el lugol adquirirá un color azul oscuro (prueba positiva.)


2.- Prueba de Fehling ( se utiliza para identificar azucares reductores
  • Agregar 5ml de solución de Fehling  A y 0.5 ml de Fehling B a una pequeña porción de muestra colocada en un tubo de ensaye
  • Agregar 2ml de agua si la muestra es solida
  • Caliente a ebullición por 2 minutos, cuidando que la muestra no se proyecte. El calentamiento puede realizarse en baño maría y la boca de los tubos debe de estar dirigida donde no haya personas.
  • Observar el color de la reacción y anotar resultados.
  • Repite la prueba con por lo menos 5 alimentos diferentes
Si la muestra contiene azucares reductores, al reaccionar con el reactivo de Fehling se formara precipitado café rojizo (positivo)  si no, la muestra queda de color azul del reactivo (prueba negativa.)


Reacciones para identificar proteínas.
Prueba de Biuret (para identificar proteínas y pitidos, no menores de 3 aminoácidos, en solución o al estado solido.

  • Agregar 1ml de reactivo de Biuret a una pequeña porción de muestra colocada en cada tubo de ensaye.
  • observar la coloración que toma la muestra
  • Anotar resultados en el cuadro
  • Repite la prueba por lo menos 5 alimentos diferentes.
Si en la prueba hay proteínas se observara que la muestra toma una coloracion violeta o morada (prueba positiva) si se queda de color azul ( prueba negativa)
   

2.- Reacción Xantoproteica  ( para identificar proteínas que contienen aminoácidos aromáticos)
  • Agregar 1ml de ácido nítrico concentrado a una pequeña porción de muestra colocada en el tubo de ensaye, caliente con precaución, sujetando el tubo con las pinzas para tubo de ensaye, y metiendo y sacando el tubo de la flama para evitar que se proyecte la solución ( dirigiendo la boca del tubo donde no haya personas)
  • Deje resbalar por las paredes del tubo 1 ml de hidróxido de amonio ( no respires los vapores) se agita de tal forma que se formen dos capas, 
  • Anotar resultados
  • Repite la prueba por lo menos 5 alimentos diferentes.
Si en la muestra hay proteínas, se formara un anillo de color naranja entre las capas formadas por el ácido y el hidróxido.


Reacciones para identificar lipidos.

1,. Reacción con Sudan III ( en base que con este colorante soluble en grasas e insoluble en agua.)
  • Coloca en los tubos pequeñas porciones de muestras.
  • Agregar a cada tubo 5ml de agua de grifo.
  • Agregar 3 gotas del reactivo Sudan III
  • Agitar enérgicamente y deja reposar por  5min.
  • Observa la formación de gotas de grasa coloreadas con Sudan III de color naranja, lo cual indica que el alimento contiene grasa 
  • Anotar resultados
  • Repite la prueba con por lo menos 5 alimentos diferentes. 

Prueba con papel estraza

  • Colocar pequeñas porciones de cada alimento en pedazos de papel estraza
  • Dobe el papel sobre el alimento y presione con los dedos.
  • Observa si hay areas del papel que se vean traslucidas y aparentemente húmedas, lo cual indica que el alimento contiene grasas (positivo)
  • Anotar resultados
  • Repite la prueba en por lo menos 5 alimentos diferente






















RESULTADOS:


ALIMENTO
CARBOHIDRATOS
PROTEIANAS
LIPIDOS
LUGOL             
FEHLING
BIURET
XANTOPTOTEI
          CA
SUDAN III
ESTRAZA
Haba
X

 x
 x
X
Manzana
X
 x

 x

X
Zanaoria
X

 x

X
Higado




 x
X
Queso
X

X

 x
X
Trigo
X




X




CONCLUSION: CON ESTA PRACTICA PUDIMOS IDENTIFICAR QUE BIOMOLECULAS CONTIENEN LOS DISTINTOS ALIMENTOS QUE ANALIZAMOS, Y ES MUY SENCILLA DE REALIZAR.